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        CRISPR研究人員開發(fā)精確 無模板基因組編輯的方法

        通過創(chuàng)建機(jī)器學(xué)習(xí)算法,預(yù)測人類和小鼠細(xì)胞如何響應(yīng)CRISPR誘導(dǎo)的DNA斷裂,由Broad研究所和布萊根婦女醫(yī)院的研究人員領(lǐng)導(dǎo)的研究小組發(fā)現(xiàn),細(xì)胞通常以精確的方式修復(fù)破碎的基因。可預(yù)測的,有時甚至將突變的基因恢復(fù)到健康的版本。此外,研究人員將這種預(yù)測能力用于測試并成功糾正了患有兩種罕見遺傳疾病之一的患者細(xì)胞的突變。

        CRISPR研究人員開發(fā)精確 無模板基因組編輯的方法

        非同源末端連接(NHEJ)和微同源介導(dǎo)的末端連接(MMEJ)過程是涉及修復(fù)Cas9介導(dǎo)的雙鏈斷裂的主要途徑,其可導(dǎo)致包含數(shù)百種修復(fù)基因型的高度異質(zhì)性修復(fù)結(jié)果。雖然已經(jīng)利用Cas9介導(dǎo)的雙鏈DNA斷裂的末端連接修復(fù)來促進(jìn)DNA模板的敲入或兩個切割位點(diǎn)之間的間插序列的缺失,但NHEJ和MMEJ通常被認(rèn)為不適用于精確基因組編輯應(yīng)用,研究人員指出

        他們開發(fā)了高通量化膿性鏈球菌Cas9(SpCas9)介導(dǎo)的修復(fù)結(jié)果分析,以基于人類基因組的序列特征使用1,872個靶位點(diǎn)表征Cas9誘導(dǎo)的雙鏈斷裂的末端連接修復(fù)產(chǎn)物。

        然后,他們使用得到的指導(dǎo)RNA庫來訓(xùn)練他們在德爾菲命名的機(jī)器學(xué)習(xí)模型,以預(yù)測5種人和小鼠細(xì)胞系中高至1至60堿基對缺失和1堿基對插入的基因型和頻率。 。InDelphi預(yù)測,5%至11%的針對人類基因組的Cas9指導(dǎo)RNA將成為研究人員所稱的“精確50” - 產(chǎn)生的單一基因型占所有主要編輯產(chǎn)品的50%以上。

        通過各種實驗,他們證實195個人類疾病相關(guān)等位基因的精確-50插入和缺失,包括將致病等位基因的原發(fā)性患者衍生成纖維細(xì)胞修正為Hermansky-Pudlak綜合征的野生型基因型,導(dǎo)致血液凝固缺乏和白化病,和門克斯病,導(dǎo)致銅缺乏。

        他們使用德爾福設(shè)計14種gRNA進(jìn)行高精度無模板編輯,在內(nèi)源性人類疾病相關(guān)基因座中產(chǎn)生可預(yù)測的1-bp插入基因型,并在兩種人類細(xì)胞系中進(jìn)行實驗證實高度精確的編輯。“我們使用德爾菲揭示人類致病等位基因,這些等位基因是有效和精確的無模板功能獲得基因型校正的候選者,并且在野生型基因型中獲得了183個致病性人類微復(fù)制等位基因的無模板校正,≥50%編輯產(chǎn)品,“作者寫道。“最后,我們整合這些發(fā)展,以實現(xiàn)人和小鼠細(xì)胞中五種致病性低密度脂蛋白受體(LDLR)微復(fù)制等位基因的高精度校正,

        重要的是,研究人員得出結(jié)論,預(yù)測Cas9介導(dǎo)的產(chǎn)品的能力可以實現(xiàn)新的精確基因組編輯研究應(yīng)用并促進(jìn)現(xiàn)有應(yīng)用,例如執(zhí)行有效的雙等位基因敲除和預(yù)測HDR的末端連接副產(chǎn)物。

        此外,他們發(fā)現(xiàn)抑制NHEJ增強(qiáng)了病原微復(fù)制等位基因的修復(fù),這表明臨時操作DNA修復(fù)途徑可以與Cas9介導(dǎo)的編輯相結(jié)合,以高精度地支持特定的編輯基因型。研究人員還認(rèn)為,如果在德爾菲獲得適當(dāng)?shù)挠?xùn)練數(shù)據(jù),它還可以學(xué)習(xí)準(zhǔn)確預(yù)測其他設(shè)計師核酸酶的修復(fù)基因型。

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